КОЛИЧЕСТВЕННАЯ ОЦЕНКА КЛИНИЧЕСКОЙ КАРТИНЫ СЕРДЕЧНОЙ НЕДОСТАТОЧНОСТИ
Аутоантитела к фрагменту АМРА/ квисквалатного типа глутаматного рецептора при модельной эпилепсии у крыс // Нейрохимия. - 1997.
- Т. 14. - №2. - С. 75-87.
11. Гранстрем О.К., Туров А., Изыкенова Г.А., Дамбинова С.А. Появление аутоантител к GluR1 субъединице АМРА глутаматного рецептора в крови предшествует развитию пароксизмальной активности мозга у крыс с модельной эпилепсией, вызванной
131
Современные технологии в медицине
№Щ2001
132
№ !■ 2001
Современные технологии в медицине
О
Q О 500 450 400 350 300 250 200 150 100
50 0
]GluR1 1NMDA
Эпилепсия
Инсульт
Рис. 3. Уровни аА к фрагментам АМРА и NMDA глутаматных рецепторов в крови больных эпилепсией (n=34) и с
ишемическими инсультами (n=20), p<0,05.
имплантацией кобальта // Нейрохимия. - 2000. - Т. 17, №1. - С. 42-47.
Summary
The role of glutamate receptors in the brain spiking activity is presented. The electroencephalographic (EEG) spiking activity has been monitored and autore-active antibodies to subunits of glutamate receptors were assessed in the serum of epileptic patients. We showed that level of GluR autoantibodies in blood serum of patients correlate with brain paroxysmal activity. These data have confirmed our observations about aA level to glutamate receptors in the blood of epileptic patients. Proposed approach could be recommended as additional criterion for diagnostic of nervous diseases such as epilepsy and ischemic stroke.
133
раткпе сообщения
УСОВЕРШЕНСТВОВАННЫЙ МЕТОД ВЫЯВЛЕНИЯ БАКТЕРИОФАГОВ А.Г.Бойцов, Е.А.Шилова, Ю.Ю. Ильясов, Д.А.Кореньков
Санкт-Петербургская государственная медицинская академия им. И.И.Мечникова
В последние годы вновь повысился интерес к бактериофагам. Это связано, с одной стороны, с все более широким применением бактериофагов в качестве лекарственных препаратов на фоне нарастающего распространения штаммов микроорганизмов со множественной лекарственной устойчивостью [5, 6, 7], а с другой - с использованием их в качестве санитарно-пока-зательных микроорганизмов для ряда объектов [3]. В связи с вышеизложенным ежегодно увеличивается число лабораторий, выполняющих различные работы с фагами. Чаще всего эти работы связаны с необходимостью выявления бактериофагов в различных объектах, где они присутствуют вместе с бактериями. Сопутствующая бактериальная флора препятствует обнаружению фагов. Поэтому технология их выявления практически в любом материале предусматривает удаление сопутствующих микроорганизмов. Для этой цели традиционно используется либо обработка материала химическим веществом, убивающим бактерии, но не фаги, либо фильтрация через фильтры, удерживающие бактерии, но не фаги [4].
При обнаружении бактериофагов E.coli часто применяется обработка исследуемого материала хлороформом [2]. Этот простой в техническом отношении прием, с одной стороны, сопряжен с использованием токсичного вещества, а с другой - не является универсальным. Например, фаги стафилококков чувствительны к хлороформу и погибают во время обработки.
Процедура фильтрации с целью выделения бактериофагов обычно предусматривает использование мембранных или ядерных фильтров, закрепленных в специальных обоймах. Наиболее удобны для фильтрации небольших объемов специальные насадки на шприц. Однако они дорогостоящи, дефицитны, а процесс фильтрации с их помощью весьма трудоемок.
Целью настоящей работы была разработка простой технологии удаления сопутствующей бактериальной флоры при выделении бактериофагов с помощью ядерных фильтров без применения специальных фильтрационных устройств. Подобная технология была с успехом использована для выделения кампи-лобактеров [1]. Суть метода заключается в нанесении исследуемого материала на ядерный фильтр, находящийся на поверхности питательной среды.
В работе были использованы ядерные фильтры производства Объединенного института ядерных исследований (г.Дубна) с диаметром пор 0,02 мкм. Из полотна фильтра вырезали квадраты размером 2х2 см, перекладывали их фильтрованной бумагой, упаковывали в общий конверт по 10 - 15 штук и стерилизовали в автоклаве при 121 оС 20-30 мин или в воздушном стерилизаторе при 170 оС 45 мин
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 33 34 35 36 37 38 39 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 51 52