КОЛИЧЕСТВЕННАЯ ОЦЕНКА КЛИНИЧЕСКОЙ КАРТИНЫ СЕРДЕЧНОЙ НЕДОСТАТОЧНОСТИ

Аутоантитела к фрагменту АМРА/ квисквалатного типа глутаматного рецептора при модельной эпилепсии у крыс // Нейрохимия. - 1997.

- Т. 14. - №2. - С. 75-87.

11. Гранстрем О.К., Туров А., Изыкенова Г.А., Дамбинова С.А. Появление аутоантител к GluR1 субъединице АМРА глутаматного рецептора в крови предшествует развитию пароксизмальной активнос­ти мозга у крыс с модельной эпилепсией, вызванной

131

Современные технологии в медицине

№Щ2001

132

№ !■ 2001

Современные технологии в медицине

О

Q О 500 450 400 350 300 250 200 150 100

50 0

]GluR1 1NMDA

Эпилепсия

Инсульт

Рис. 3. Уровни аА к фрагментам АМРА и NMDA глутаматных рецепторов в крови больных эпилепсией (n=34) и с

ишемическими инсультами (n=20), p<0,05.

имплантацией кобальта // Нейрохимия. - 2000. - Т. 17, №1. - С. 42-47.

Summary

The role of glutamate receptors in the brain spik­ing activity is presented. The electroencephalographic (EEG) spiking activity has been monitored and autore-active antibodies to subunits of glutamate receptors were assessed in the serum of epileptic patients. We showed that level of GluR autoantibodies in blood se­rum of patients correlate with brain paroxysmal activi­ty. These data have confirmed our observations about aA level to glutamate receptors in the blood of epileptic patients. Proposed approach could be recommended as additional criterion for diagnostic of nervous diseases such as epilepsy and ischemic stroke.

133

раткпе сообщения

УСОВЕРШЕНСТВОВАННЫЙ МЕТОД ВЫЯВЛЕНИЯ БАКТЕРИОФАГОВ А.Г.Бойцов, Е.А.Шилова, Ю.Ю. Ильясов, Д.А.Кореньков

Санкт-Петербургская государственная медицинская академия им. И.И.Мечникова

В последние годы вновь повысился интерес к бактериофагам. Это связано, с одной стороны, с все более широким применением бактериофа­гов в качестве лекарственных препаратов на фоне нарастающего распространения штаммов микроорганизмов со множественной лекар­ственной устойчивостью [5, 6, 7], а с другой - с использованием их в качестве санитарно-пока-зательных микроорганизмов для ряда объектов [3]. В связи с вышеизложенным ежегодно уве­личивается число лабораторий, выполняющих различные работы с фагами. Чаще всего эти ра­боты связаны с необходимостью выявления бактериофагов в различных объектах, где они присутствуют вместе с бактериями. Сопутству­ющая бактериальная флора препятствует обна­ружению фагов. Поэтому технология их выяв­ления практически в любом материале предус­матривает удаление сопутствующих микроор­ганизмов. Для этой цели традиционно исполь­зуется либо обработка материала химическим веществом, убивающим бактерии, но не фаги, либо фильтрация через фильтры, удерживаю­щие бактерии, но не фаги [4].

При обнаружении бактериофагов E.coli ча­сто применяется обработка исследуемого мате­риала хлороформом [2]. Этот простой в техни­ческом отношении прием, с одной стороны, со­пряжен с использованием токсичного вещества, а с другой - не является универсальным. На­пример, фаги стафилококков чувствительны к хлороформу и погибают во время обработки.

Процедура фильтрации с целью выделения бактериофагов обычно предусматривает ис­пользование мембранных или ядерных фильт­ров, закрепленных в специальных обоймах. Наиболее удобны для фильтрации небольших объемов специальные насадки на шприц. Одна­ко они дорогостоящи, дефицитны, а процесс фильтрации с их помощью весьма трудоемок.

Целью настоящей работы была разработ­ка простой технологии удаления сопутствую­щей бактериальной флоры при выделении бактериофагов с помощью ядерных фильтров без применения специальных фильтрацион­ных устройств. Подобная технология была с успехом использована для выделения кампи-лобактеров [1]. Суть метода заключается в на­несении исследуемого материала на ядерный фильтр, находящийся на поверхности пита­тельной среды.

В работе были использованы ядерные филь­тры производства Объединенного института ядерных исследований (г.Дубна) с диаметром пор 0,02 мкм. Из полотна фильтра вырезали квадраты размером 2х2 см, перекладывали их фильтрованной бумагой, упаковывали в общий конверт по 10 - 15 штук и стерилизовали в ав­токлаве при 121 оС 20-30 мин или в воздушном стерилизаторе при 170 оС 45 мин

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 33 34 35 36 37 38 39 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 51 52