Применение селективной проксимальной ваготомии

Однако возрастные изменения строения челюстей и структуры костной ткани создают дополни­тельные трудности для полноценного восстановления функции зубочелюстной системы [8]. В связи с этим одной из наиболее актуальных проблем современной челюстно-лицевой хирургии является поиск способов улучшения процесса замещения и восстановления кост­ных структур при различных патологических процессах и при старении [1].

Выбор материала для костно-пластических опера­ций челюстно-лицевой области представляет трудную задачу. Современные трансплантационные материалы, используемые в хирургической стоматологии, должны обладать выраженными остеоиндуктивными и остеоп-ластическими свойствами, слабой антигенностью, быть пластичными и легко моделироваться по форме, соот­ветствующей поверхности челюсти, быть устойчивыми к инфекции [5].

Из большого количества трансплантационных ма­териалов наиболее широко используются ауто- и ал-локостные трансплантаты. Несмотря на преимущества аутокостных трансплантатов, они имеют существенные ограничения в применении. В последние годы в основ­ном используются трансплантационные материалы био­генной природы - коллаген, брефокость, гидроксиапа-тит, деминерализованный костный матрикс [3, 7].

Результаты экспериментальных исследований по­зволили использовать гидроксиапатит и его композиции в виде биокерамики в клинической практике челюстно-лицевой хирургии для заполнения костных дефектов, образовавшихся после удаления кист челюстей [2, 4, 9]. Авторы пришли к выводу, что гидроксиапатит - вы­соко биосовместимый остеотропный материал, который создает матрицу для образования новой кости и фиброз­ной ткани путем прямого биохимического связывания.

Учитывая высокую потребность в остеопластических материалах для хирургической практики, были проведе­ны экспериментальные исследования с целью обосно­вания применения новых остеоиндуктивных материалов при устранении дефекта кости нижней челюсти.

Материалы и методы исследования

Эксперимент выполнен на 24 кроликах-самцах по­роды шиншилла в возрасте от 3,5 до 4 лет, имеющих массу тела 5-5,5 кг. Все животные прошли требуемый срок карантинного наблюдения (15 суток), затем были взяты для проведения опыта. Контрольную группу со­ставили 6 кроликов, подопытную - 18.

Всем животным под проводниковой и инфильтра-ционной анестезией 1% раствором лидокаина в коли­честве 5-6 мл производили разрез кожи и подкожной клетчатки, огибающий угол нижней челюсти, отсла­ивали надкостницу, обнажали ветвь челюсти. После этого шаровидным бором формировали дефект кости диаметром 0,4-0,5 мм. Аналогичную операцию прово­дили на противоположной стороне. У животных конт­рольных групп образовавшиеся дефекты кости запол­няли кровяным сгустком. Мягкие ткани укладывали на место и ушивали шелком. У животных подопытных групп образовавшийся костный дефект в области угла нижней челюсти справа заполняли гранулами ГАП-99, слева - полосками коллапола.

ГАП-99 представляет собой гранулы размером 0,25-2 мм круглой или неправильной формы белого цвета, в состав которого входят 50% гидроксиапа-тита и 50% трикальцийфосфата. Препарат является основой неорганического матрикса твердых тканей, биосовместим с тканями человека, стимулирует осте-огенез, способствует адсорбированию собственных морфогенетических белков человека, после запол­нения костных полостей резорбируется, замещается костной тканью.

Коллапол КП-2 представляет собой полоски разме­ром 20x8x1,5 мм, массой около 15 г, белого цвета со

106

УСПЕХИ ГЕРОНТОЛОГИИ • 2007 • Т. 20, № 4

специфическим запахом. Препарат является компо­зицией органических и неорганических составляющих костной ткани, характеризуется биосовместимостью с тканями человека и не вызывает реакции отторже­ния, усиливает остеогенез и служит для восстановле­ния тканей пародонта.

Через 1, 7, 14, 30, 60 и 90 суток из опыта выводили по одному кролику контрольной группы (по 2 костные полости) и по 3 кролика подопытной группы (6 полос­тей, 3 - с ГАП-99 и 3 - с коллаполом). Вычленяли нижнюю челюсть от мягких тканей, участок кости, где имелся дефект, выпиливали размером 1 x1 см и вы­держивали в 10% растворе нейтрального формали­на в течение 2 суток. После этого фрагменты челюс­ти декальцинировали раствором соляной кислоты в течение 48 ч, замораживали раствором хлорэтила и заливали в парафин. Из парафиновых блоков делали срезы толщиной 3-5 мкм и готовили микропрепара­ты, которые окрашивали гематоксилином-эозином и пирофуксином по Ван-Гизону.

Обсуждение результатов

В первые сутки послеоперационного периода общее состояние животных соответствовало тяжести прове­денного хирургического вмешательства. Они были мало подвижными, плохо принимали пищу. В последующие сроки состояние животных улучшалось, они стали ак­тивными и начали принимать стандартную пищу. В течение всего срока наблюдения за животными после­операционная рана была чистой, случаев ее нагноения не наблюдалось.

В результате морфологического исследования кос­тной ткани в области бывшего костного дефекта через одни сутки после формирования дефекта и заполнения его кровяным сгустком (контрольная группа), а также гранулами ГАП-99 и коллаполом (подопытная группа) были обнаружены следующие изменения.

У животных контрольной группы послеоперацион­ный дефект был заполнен гомогенной массой с густой сетью переплетающихся нитей фибрина, в пристеноч­ных участках определялись эритроциты и распадающи­еся лейкоциты. Сосуды были резко расширены и пол­нокровны, расположенные рядом с дефектом гаверсовы каналы заполнены рыхлой соединительной тканью.

При морфологическом исследовании костной ткани подопытных животных была выявлена зрелая компак­тная костная ткань с мелкими полостями (лакунами) овальной и округлой формы, где размещены остеоциты, надкостница (периост), состоящая из наружного волок­нистого слоя и внутреннего остеогенного слоя. В мес­те повреждения наблюдались массивные некрозы всех тканей с обширными кровоизлияниями (образованием гематомы).

На 30-е сутки наблюдения полости нижней челюс­ти у животных контрольной группы были полностью заполнены грануляционной тканью, которая по перифе­рии дефекта замещалась соединительнотканным реге­нератом, содержащим множество кровеносных сосудов и клеточных элементов.

У кроликов подопытной группы в месте повреж­дения кости наблюдались очаговая воспалительная инфильтрация, незначительные очаги кровоизлияний, меньшего размера по сравнению с предыдущими срока­ми наблюдения; появление более зрелых соединитель­нотканных волокон; выраженное полнокровие сосудов; активация, пролиферация остеобластов периоста, рас­ширение костных лакун, зрелой соединительной ткани с сосудами с уже сформированной сосудистой стенкой, состоящей из эндотелиального, мышечного и адвенти-циального слоев, появление фокусов хрящеобразова-ния - хондробластов, формирования фиброзно-хря-щевой ткани.

По истечении 60 суток наблюдения у животных контрольной группы костные полости были заполне­ны клеточно-волокнистой соединительной тканью. По периферии полости намечалось формирование костной ткани.

У животных подопытной группы в месте повреж­дения кости наблюдались зрелая соединительная ткань, представленная коллагеновыми волокнами, выраженное полнокровие сосудов и пролиферация остеобластов над­костницы, сформированная фиброзно-хрящевая ткань и остеоидная ткань.

При окраске по Ван-Гизону исходная ткань окра­шивалась в красный цвет, гидроксиапатит - в зеленый цвет. Видно более интенсивное замещение гидроксиа-патитом ткани в месте повреждения и диффундирова­ние в окружающие ткани (рис. 1).

На 90 сутки наблюдения у животных контрольной группы послеоперационные костные дефекты нижней челюсти были полностью заполнены клеточно-волок-нистой соединительной тканью, в которой преобладали волокнистые структуры. В периферических участках

Рис. 1. Подопытная группа животных, 60 суток наблю­дения.

В месте повреждения кости соединительная ткань, пол­нокровие сосудов и пролиферация остеобластов надкост­ницы, сформированная фиброзно-хрящевая и остеоидная ткань. Окраска по Ван-Гизону (красный цвет - костная ткань, зеленый цвет - гидроксиапатит ГАП-99).

Б.К. Ботабаев

Рис. 2. Подопытная группа животных, 90 суток наблюдения. Дефект кости полностью заполнен гранулами ГАП-99. Окраска по Ван-Гизону (красный цвет - костная ткань, зеленый цвет - гидроксиапатит ГАП-99).

дефекта наблюдались процессы формирования костной ткани. Костные трабекулы, опирающиеся своим ши­роким основанием на костную стенку полости, по на­правлению к центру быстро истончались, округлялись в аркады, в результате чего на периферии дефекта в виде неравномерной каймы образовалась грубоволокнистая костная ткань

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 33 34 35 36 37 38 39 40 41 42 43 44 45 46 47 48 49 50 51 52 53 54 55 56 57 58 59 60 61 62 63 64 65 66 67 68 69 70 71 72 73 74 75 76 77 78 79 80